Строение яичника млекопитающего под микроскопом


Яйцеклетка под микроскопом - фото - строение

Вернуться к списку Задать свой вопрос

 

 

Студентам медицинских колледжей наверняка запомнилась лекция, на которой рисуют в тетрадках «глазок с ресничками». Эта первая ассоциация, возникающая при просмотре яйцеклетки под микроскопом. Рассмотреть ее можно уже на увеличении 200x. Применяется метод проходящего света – в этом случае прокрашенный и зафиксированный микропрепарат просвечивается снизу светодиодным или ламповым осветителем. Современная микроскопия обеспечивает получение качественных микрофотографий, картинку можно вывести на монитор ноутбука или ПК, если в окулярную трубку установить цифровую камеру.  

Яйцеклетка – это неподвижная половая репродуктивная клетка крупных размеров, гамета млекопитающих, диаметром 130-170 микрометров. Имеет одинаковый набор непарных хромосом, содержащих наследственную информацию, т.е. передающуюся потомству. Ограничена мембраной внутри которой находится полужидкая цитоплазма, богатая желтком - питательными веществами, называемыми дейтоплазмой - белки, жиры, фосфолипиды. Подразделяется на четыре типа: умеренно и резко тело­лецитальная (рыбы, птицы), алецитальная (у человека, отличается небольшими желточными включениями), изолецитальная (примитивные морские животные).

Ее развитие называется оогенезом, в этот период эмбриональный гоноцит вселяется в женские железы - яичники, располагаемые в тазовой области. Из оплодотворённой яйцеклетки начинает развиваться зародыш - эмбрион, который в конечной стадии приобретает способность к самостоятельному питанию и перемещению.   

 

Строение яйцеклетки под микроскопом можно увидеть в процессе микроскопирования в светлом поле:

  • Лучистый венец, представленный фолликулярными клетками;
  • Полярное тельце, образованное в результате мейотического редукционного деления;
  • Блестящая прозрачная гликопротеиновая оболочка;
  • Пронуклиусы - гаплоидные ядра, которые по своему внешнему виду позволяют оценивать жизнеспособность млекопитающего.
  • Цитоплазматическая оволемма;
  • Микроворсинки – клетчатые выросты микровилли;
  • Ядро и ядрышко, присущие эукариотам;
  • Кортикальный слой, микротрубочки, являющиеся основой цитоскелета.

Методика наблюдения заключается в подготовке гистологического препарата. Если имеющиеся лабораторные условия для этого недостаточны, нет возможности произвести забор биоматериала, осуществить фиксацию в формальдегиде и по всем правилам окрасить эозином, то рекомендуется воспользоваться образцами, сделанными для школ и высших учебных заведений: например, комплект Levenhuk N20 (Анатомия и Физиология) – в него уже входит гамета, заключенная между предметным и покровным стеклами. Микрообразец располагается на столике ровно по центру, под линзой объектива. Далее происходит настройка конденсора, для улучшения контрастирования входящий световой пучок должен быть максимальным. Последовательная смена кратностей производится в диапазоне от 40 до 640 крат, четкость детализации изображения достигается вращением ручек механизма фокусировки.

Согласно школьного или вузовского практикума рекомендованы биологические монокулярные модели с нижней подсветкой и револьвером на четыре позиции: Биомед-2, Микромед-Р1. 

 

Непрерывности между митохондриями и эндоплазматическим ретикулумом в яичнике млекопитающих

 @article {Ruby1969ContinuitiesBM, title = {Связь между митохондриями и эндоплазматическим ретикулумом в яичнике млекопитающих}, автор = {Дж. Руби, Р. Ф. Дайер и Р. Скалко}, journal = {Zeitschrift f {\ "u} r Zellforschung und Mikroskopische Anatomie}, год = {1969}, объем = {97}, страницы = {30-37} } 
Резюме: Исследование развивающихся ооцитов мышей с помощью электронного микроскопа выявило тесную морфологическую связь между митохондриями и эндоплазматическим ретикулумом.[...] Ключевой результат Во многих случаях было замечено, что внешняя митохондриальная мембрана непрерывна с ретикулярными мембранами. Эти цитоплазматические мембраны гладкие или усеяны рибосомами. Эти непрерывности создают открытый канал между эндоплазматическим ретикулумом и митохондриями. Подобные связи также встречаются в отдельных препаратах… Развернуть Аннотация

Сохранить в библиотеку

Создать оповещение

Ссылка

Запустить ленту исследований

.

Культура и совместное культивирование яичников мыши и фолликулов яичников

Здесь мы описываем различные системы культивирования, которые можно использовать для поддержки развития фолликулов яичников мыши in vitro с использованием целых неонатальных яичников, содержащих только самые ранние стадии фолликулов, отдельные преантральные фолликулы яичников, а также совместные культуры двух тканей.

Культура яичников новорожденных мышей поддерживает раннее развитие яичников, в частности, инициацию роста фолликулов до стадии вторичного фолликула.Для этих культур можно использовать новорожденных мышей разного возраста, в зависимости от представляющих интерес стадий развития. Если яичники получены от новорожденных мышей, формирование фолликулов будет происходить, но еще не завершено: культура будет, по крайней мере, частично поддерживать продолжающееся образование фолликулов с последующим ростом фолликулов. В качестве альтернативы, использование яичников мышей в возрасте от четырех до пяти дней (к этому времени уже завершено формирование фолликулов) приводит к культивированию большего числа первичных и растущих фолликулов 12 .К полезным аспектам описанной здесь конкретной методики относятся использование плавающих поликарбонатных мембран, которые обеспечивают большее насыщение тканей кислородом, и культивирование в очень простой среде, состоящей только из αMEM и BSA, избегая использования неопределенных добавок, таких как сыворотка. Культура целых яичников, по-видимому, не поддерживает развитие за пределами стадии вторичного фолликула, с последующим развитием, требующим изменения техники, такой как рассечение комплексов фолликул-гранулезных клеток из культивированного неонатального яичника 1 .

Более поздние стадии развития фолликулов могут быть развиты in vitro путем иссечения отдельных интактных поздних преантральных фолликулов, которые можно выращивать до преовуляторной стадии в культуре, сохраняя при этом их трехмерную структуру. Использование интактных фолликулов для этого метода культивирования поддерживает взаимосвязь между различными фолликулярными компонентами, как это происходит in vivo . Эта система культивирования может использоваться для получения ооцитов, которые могут поддерживать оплодотворение и последующее развитие эмбриона.

Оплодотворяемые ооциты также могут быть получены из неонатальных яичников мышей с использованием первоначального протокола культивирования, как описано здесь, с последующим вторым этапом, во время которого выращиваются комплексы ооцит-гранулезные клетки in vitro 1 . Другие системы, которые довольно часто используются сегодня, включают культуру фолликулов или ткани яичников, инкапсулированную в материал, такой как альгинатный гидрогель, для обеспечения поддержки (см., Например, Tagler et al. 13 ).В настоящее время основное внимание при разработке методов уделяется совершенствованию методов культивирования яичников и фолликулов более крупных млекопитающих с долгосрочной целью получения пригодных для оплодотворения ооцитов из примордиальных фолликулов различных видов, включая человека.

В любой момент времени яичники млекопитающих содержат фолликулы на разных стадиях развития, при этом взаимодействия между фолликулами влияют на их регуляцию. Этот аспект функции яичников плохо изучен и его трудно исследовать in vivo.Последний метод, описанный здесь, использует системы совместного культивирования для поддержки развития различных стадий фолликулов in vitro . При необходимости одну или обе ткани можно предварительно обработать in vivo или in vitro перед совместным культивированием. Системы совместного культивирования, подобные этой, обеспечивают идеальный способ изучения взаимодействий фолликул-фолликул, например, как растущие антральные фолликулы влияют на пул примордиальных фолликулов - аспекты биологии яичников, которые до сих пор было трудно исследовать.

Методы посева цельного яичника довольно просты, хотя требуется тщательное рассечение, чтобы избежать случайного повреждения тканей. Рассечение отдельных фолликулов - это особый метод, требующий многократной практики, прежде чем фолликулы на нужной стадии можно будет извлечь из неповрежденного и неповрежденного яичника. Очень важно тщательно рассекать отдельные фолликулы, иначе повреждение, полученное во время протокола рассечения, может привести к гибели фолликула в последующий период культивирования.Если фолликулы помещаются непосредственно в лунку микротитровальных планшетов, важно использовать только пластик, не обработанный культурой ткани, чтобы свести к минимуму оседание текальных клеток на пластике: если используется пластиковая посуда, обработанная культурой ткани, фолликулы будут прикрепляться к пластику. основание колодца и разрыв по мере роста. Для всех работ по совместному культивированию ткани должны находиться в непосредственном контакте друг с другом.

Среда, описанная выше для использования в методике культивирования фолликулов, включает добавление мышиной сыворотки.Можно заменить мышиную сыворотку фетальной бычьей сывороткой, но только единичные партии такой сыворотки будут полностью поддерживать развитие фолликула до преовуляторной стадии, при этом для определения подходящих источников требуется тестирование партии. Также рекомендуется серийное тестирование ФСГ, так как Международные единицы, по которым оценивается ФСГ, только грубо коррелируют с ростом фолликулов in vitro . Если в период культивирования обычно происходит разрыв фолликула, подумайте о замене исходной аскорбиновой кислоты свежей партией.

Для этих методов не требуется особо специализированного оборудования, кроме препаровальных микроскопов и инкубаторов для культур тканей, хотя использование вытяжного шкафа с ламинарным потоком и хорошая стерильная техника позволяют культивировать фолликулы яичников в отсутствие антибиотиков, как в описанных здесь методах. Это может быть полезно, чтобы избежать любого потенциального вредного воздействия антибиотиков на ооциты, особенно если они должны быть оплодотворены после посева. Если невозможно работать в стерильной среде, рекомендуется добавить антибиотики в среду для препарирования и культивирование.

.

[PDF] Новая модель развития яичников и фолликулов млекопитающих

 @article {Hummitzsch3013ANM, title = {Новая модель развития яичников и фолликулов млекопитающих}, автор = {K. Хаммитч, Х. Ирвинг-Роджерс, Н. Хациродос, У. Боннер, Л. Сабатье, Д. Рейнхардт, Ю. Садо, Ю. Ниномия, Д. Вильгельм и Р. Роджерс}, journal = {PLoS ONE}, год = {2013}, объем = {8} } 
Фолликулярные гранулезные клетки яичников окружают ооциты и питают их, а также производят половые стероидные гормоны.Считается, что во время развития поверхностные эпителиальные клетки яичников проникают в яичник и развиваются в клетки гранулезы, когда они соединяются с оогониями с образованием фолликулов. Используя яичники плода крупного рогатого скота (n = 80), мы определили новый тип клеток, названный GREL от Gonadal Ridge Epithelial-Like. Используя 26 маркеров для GREL и других клеток и внеклеточного матрикса, мы провели иммуногистохимию… ПРОДОЛЖИТЬ ЧТЕНИЕ

Сохранить в библиотеку

Создать оповещение

Cite

Launch Research Feed

.

Имплантация - Эмбриология

Личное сообщение доктора Марка Хилла (май 2020 г.)
Я решил досрочно выйти на пенсию в сентябре 2020 года. За многие годы работы в Интернете я получил замечательные отзывы от многих читателей, исследователей и студентов, интересующихся эмбриологией человека. Я особенно благодарен своим соавторам-исследователям и авторам сайта. Хорошая новость: Embryology останется в сети, и я продолжу свое сотрудничество с UNSW Australia.Я с нетерпением жду обновления и включения множества интересных открытий в эмбриологии!

Введение

Человеческий концептус полностью имплантирован (этап 5).

Термин «имплантация» используется для описания процесса прикрепления и инвазии эндометрия матки бластоцистой (концептусом) у плацентарных животных. У людей этот процесс начинается в конце 1-й недели, при большинстве успешных беременностей у людей имплантируют концептус через 8–10 дней после овуляции, а потеря беременности на ранних сроках увеличивается с более поздней имплантацией. [1] Процесс имплантации продолжается до второй недели развития.


Начальным этапом процесса имплантации является «адплантация». Эта первая фаза требует, чтобы только что вылупившаяся бластоциста непрочно прилегала к эпителию эндометрия, часто «катясь» к месту имплантации, где она прочно прилегает. Этот процесс требует как адгезионного взаимодействия бластоцисты с эндометрием во время «рецептивного окна».


Последующее развитие плаценты позволяет матери поддерживать эмбриональное и внутриутробное развитие.Если имплантация не прошла в течение менструального цикла в достаточной степени, чтобы обеспечить гормональную обратную связь с яичником, то следующий цикл может начаться, что приведет к потере концептуального элемента. Имеются также доказательства, полученные на животных моделях, что концептуальные существа с основными генетическими особенностями не развиваются или не имплантируются правильно, что приводит к их потере в течение первой и второй недель развития.


В последние годы с развитием вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ или ЭКО) растет интерес к этому процессу, к методам, которые вводят бластоцисты в матку, чтобы обеспечить нормальную имплантацию.


Аномальная имплантация - это когда этот процесс не происходит в теле матки (эктопия) или плацента формируется неправильно. Кроме того, имплантация может происходить нормально, но с аномальной концепцией, например, при развитии пузырного пузыря.

Некоторые недавние открытия

Беременность человека и опоссума [2]
  • Rab-путь, индуцированный гипоксией, регулирует имплантацию эмбриона путем контролируемого перемещения секреторных гранул

PNAS «У многих видов млекопитающих имплантация эмбриона и процессы ранней беременности происходят в гипоксической среде.Однако механизмы, лежащие в основе адаптации матери к гипоксии на ранних сроках беременности, остаются неясными. Эта работа раскрыла важный механизм размножения и развития млекопитающих путем идентификации материнских секреторных гранул, которые обеспечивают молекулярный диалог между компартментами материнской ткани во время ранней беременности. Этот диалог, который является молекулярной основой адаптации к гипоксии, имеет решающее значение для имплантации эмбриона и установления беременности ».

  • N-гликозилирование эндометрия матки определяет его восприимчивость [3] «Гликозилирование изменяет молекулярные и функциональные характеристики гликопротеинов, что тесно связано со многими физиологическими процессами и заболеваниями.Во время «окна имплантации» эндометрий матки трансформируется в рецептивный статус для принятия эмбриона, тем самым обеспечивая успешную имплантацию эмбриона. В этой статье мы стремились изучить роль N-гликозилирования, основного типа модификации гликопротеинов, в процессе установления рецептивности эндометрия. Результаты показали, что ткани эндометрия матки человека в средней секреторной фазе проявляли лектин PHA-E + L (распознает разветвленные N-гликаны) -положительные N-гликаны, как измерено с помощью анализа флуоресцентного окрашивания лектина.Используя модель имплантации in vitro, мы обнаружили, что де-N-гликозилирование эндометриальных клеток Ishikawa и RL95-2 человека туникамицином (ингибитор N-гликозилирования) и пептид-N-гликозидазой F (PNGase F) нарушает их восприимчивую способность к человеческому воздействию. трофобластические клетки JAR. Между тем, N-гликозилирование интегрина αvβ3 и рецептора фактора ингибирования лейкемии (LIFR), как обнаружено, играют ключевую роль в регуляции ECM-зависимых сигнальных путей FAK / Paxillin и LIF-индуцированных STAT3, соответственно, влияя, таким образом, на рецептивные потенциалы клеток эндометрия.Кроме того, эксперименты in vivo и модель совместного культивирования первичных клеток эндометрия мыши и эмбрионов дополнительно подтвердили, что N-гликозилирование клеток эндометрия мыши способствовало успешной имплантации. Наши результаты предоставляют новые доказательства того, что N-гликозилирование эндометрия матки важно для поддержания рецептивных функций, что дает лучшее понимание гликобиологии имплантации ».
  • Динамика дифференцировки трофобластов у человека на периимплантационной стадии эмбрионов [4] «Секвенирование одноклеточной РНК клеток из культивируемых бластоцист человека позволило нам определить транскриптомный ландшафт плацентарного трофобласта (ТБ), который окружает эпибласт и связанные с ним эмбриональные ткани в течение загадочного 8-го дня (D8) до Периимплантационный период D12 до образования ворсинок плаценты.Мы проанализировали транскриптомы трех ранних типов плацентарных клеток, cytoTB (CTB), syncytioTB (STB) и migratoryTB (MTB), отобранные вручную из культивируемых эмбрионов, диссоциированных трипсином, и смогли проследить подлиния, которые возникли из пролиферирующих CTB на периферии концептус. Уникальная форма CTB с некоторыми особенностями STB была обнаружена на D8, в то время как зрелая STB была в зените на D10. Форма MTB со смешанным фенотипом MTB / CTB возникла около D10. К D12 генерация STB снижалась, CTB вступил в новую фазу пролиферации, и зрелые клетки MTB начали перемещаться из основной части концептуса.Примечательно, что транскриптом MTB в D12 указывает на обогащение транскриптов, связанных с передачей сигналов IFN, миграцией и инвазией, а также на повышающую регуляцию HLA-C, HLA-E и HLA-G. STB, который отличается от STB более поздних ворсинчатых STB, имел фенотип, соответствующий интенсивному экспорту белка и продукции плацентарного гормона, а также миграции и инвазии. Исследования показывают, что туберкулез, связанный с человеческими эмбрионами, быстро развивается в период периимплантации, когда он должен вторгнуться, дать матери надежный сигнал для продолжения беременности и установить первый контакт с материнской иммунной системой."
Последние статьи

Эта таблица позволяет выполнять автоматический компьютерный поиск во внешней базе данных PubMed с использованием текстовой ссылки «Поисковый запрос».

  • Для этого поиска теперь требуется ссылка вручную, поскольку исходное расширение PubMed было отключено.
  • Отображаемый список ссылок не отражает какой-либо редакционный выбор материала на основе содержания или актуальности .
  • Ссылки также появляются в этом списке на основе даты фактического просмотра страницы.


Ссылки, перечисленные на остальной части страницы содержания и связанной странице обсуждения (перечисленные под подзаголовками года публикации), действительно включают некоторые редакционные выборы, основанные как на релевантности, так и на доступности.

Подробнее? Ссылки | Страница обсуждения | Поиск журнала | Рекомендации 2019 | Рекомендации 2020

Поисковый запрос: Имплантация человека + эмбриона | Имплантация эмбриона | Эктопическая имплантация | Имплантация матки

Старая бумага
Изначально эти документы появлялись в таблице «Некоторые недавние результаты», но по мере того, как этот список увеличивался, теперь они были перемещены в эту сворачиваемую таблицу.

См. Также страницу обсуждения для других ссылок, перечисленных по годам, и ссылок на этой текущей странице.

  • Имплантация эмбриона произошла из наследственной воспалительной реакции прикрепления [2] «Молекулярные изменения, поддерживающие имплантацию у здоровых млекопитающих, необходимы для установления беременности. У сумчатых беременность относительно коротка, и хотя плацента все же образуется, она присутствует всего за несколько дней до родов, однако морфологические изменения в матке сумчатых во время родов имитируют те, которые происходят во время имплантации людям и мышам.Мы исследовали молекулярное сходство между доношенной беременностью у сумчатых и имплантацией у здоровых млекопитающих с использованием серого короткохвостого
.

Смотрите также